細胞分泌外泌體的過程一般分為三個階段:(1)質膜內陷,形成早期內吞小泡;(2)內吞小泡向內萌發成熟,形成多囊泡體;(3)多囊泡體與質膜融合,并釋放出囊泡內容物,形成外泌體。外泌體具有獨特的理化性質,其密度為1.13~1.19g/mL,由平均厚度小于5nm的雙層脂膜所包裹,具有典型杯狀形態,呈現為扁平球形。外泌體表面富含多糖鏈,其質膜主要由溶血磷脂酸、磷脂酰絲氨酸、膽固醇、神經酰胺和鞘磷脂構成,另有與細胞來源相關的部分特殊脂類。外泌體可攜帶蛋白質、核酸和脂質等生物活性大分子,其中主要為蛋白質,且大部分蛋白為所有來源外泌體所共有,只有小部分與其來源有關,為其分泌細胞的特有蛋白,能夠反映分泌細胞的類型和生理病理狀態。除此之外,外泌體可攜帶大量mRNA和miRNA等核酸,并將其運輸到靶細胞,發揮相應的生物學功能。各種細胞粘著分子在外泌體膜表面表達，由其決定外泌體被運輸往哪一種細胞。血液外泌體鑒定

外泌體是各種細胞外泌的直徑在30-100nm之間的膜囊泡。因外泌體內含mRNA、microRNA等核酸和蛋白質對相鄰細胞具有交換信息的功能。作為細胞間信號傳導的通訊工具和作為病等各種疾病的生物標記話題比較熱門。近些年關于外泌體研究很普遍，但是關于外泌體相關的實驗技術，關于需要改進的課題存在很多。例如，外泌體提純方法中，超速離心法和聚合物沉淀法（市售試劑盒）混入多種雜質，給后續實驗產生了許多障礙。抗體親和法和密度梯度離心法，雖然可以提取到高純度的外泌體，但不能提取完整外泌體，無法分析外泌體具有的生理功能，也是兩種提取方法的問題所在。而免疫印跡法（WB）和Elisa檢測法作為被普遍應用的外泌體檢測的一般方法，又存在檢測時需使用大量外泌體和難以檢測到低表達水平的標記蛋白。血液外泌體鑒定外泌體作為細胞間信號傳導的通訊工具和作為病等各種疾病的生物標記話題比較熱門。

結果表明，PS親和法可以檢測到許多目前為止都無法檢測的外泌體蛋白質和RNA。應用Tim4的外泌體強結合能力，可用ELISA或FACS高靈敏度定性檢測、定量分析外泌體。以前無法用超速離心法提取的微囊泡，也通過運用PS親和法實現高純度提取。本指導書中對該技術進行詳細說明，這項技術的有用性今后將受到世界各方評價，有望在外泌體和微囊泡生理功能的分析研究上起重大貢獻。外泌體的檢測和提取還遇到一個困難即：對各種外泌體的分類。研究人員尚未統一定義以何種方法提取的細胞外囊泡可以稱之為外泌體，給實驗數據的分析和重復性確認帶來困難。近年，隨著國際細胞外囊泡協會的成立、世界性研究者研討會的舉辦，提案MISEV指南作為國際標準，計劃或已經開始進行EV研究的科學家請務必閱讀這些方針。

與干細胞不同的是：干細胞外泌體對受損的微環境不響應，但它可以通過改變細胞外基質，改變受體細胞的轉錄組和蛋白質組，來調節細胞凋亡，生長，增殖和分化途徑。因此，干細胞外泌體具有減少細胞凋亡、減輕炎癥反應、促進血管生成、抑制纖維化、提高組織修復潛力等重要生物學功能，在調控組織再生方面存在良好的臨床應用前景。干細胞外泌體的優點，體積?。杭{米級粒子，大小約為細胞的1/200，因此能很好地被人體所利用。免疫反應程度低：外泌體不是細胞，只作為載具，外膜的表層上呈現較少的抗原，免疫系統難識別，對人體影響小?？纱┩秆X障壁：體積小加上脂質外膜的特性，使其可以通過血腦障壁，抵達腦部組織。有報導指出，外泌體內miRNA參與促進血管新生、抗癥性和促進膠原蛋白沉淀等一系列過程。

外泌體（Exosome）介導瘤細胞的增殖過程。瘤細胞通過與自身微環境的信息交流促進瘤細胞的增殖，而外泌體（Exosome）可以充當這種信息載體。當細胞中出現基因突變時，外泌體（Exosome）會通過膜融合把這種突變信息傳遞至其他的正常細胞，從而導致原病基因的喚醒、抗凋亡基因的表達，使瘤細胞獲得增殖特性。瘤細胞來源的外泌體（Exosome）還可以通過直接抑制免疫細胞，促進瘤細胞逃避免疫監視，為瘤細胞在體內生長創造條件。然而，雖然當前外泌體生物學仍然不成熟，但越來越多的興趣和資金投入必將加速外泌體基礎研究進展和臨床轉化。外泌體能向病變細胞輸送功能性物質，所以有很大潛力作為基因和藥物遞送的載體。血液外泌體鑒定

外泌體可以直接進入受體細胞影響細胞功能。血液外泌體鑒定

基于免疫細胞來源的外泌體能夠介導和調節機體對中流的免疫反應，外泌體在中流免疫zhiliao方面的潛力受到廣fan關注。其中樹枝狀細胞產生的外泌體包含大量的MHC-多肽復合物和免疫刺激相關的分子，能夠激huo相關的T細胞，介導體內抗中流應答，在多個臨床試驗中表現出良好的抗中流療效。Morse等考察了樹枝狀細胞外泌體對非小細胞肺ai患者的療效。結果表明，患者對樹枝狀細胞外泌體耐受性良好，1/3患者表現出了對樹枝狀細胞外泌體的T細胞響應，2/4患者自然殺傷細胞活性得以激huo。血液外泌體鑒定