瘤釋放的外泌體可以通過削弱免疫效應細胞的反應和激發免疫抑制細胞的擴增，來營造一個免疫抑制的環境。瘤釋放的外泌體可以替代瘤細胞接受免疫系統的攻擊，從而幫助瘤細胞逃過免疫系統的識別。瘤釋放的外泌體可以引發炎癥，利用基質浸潤細胞的反應營造出利于瘤生長的微環境。研究表明，在過去短短的5年里，對外泌體的研究已經取得了比較好的的進展。如今，收集并分析瘤釋放的外泌體已經成為液體活檢的一個重要研發方向。靶向瘤釋放外泌體的治理策略將對改善病癥患者的命運發揮出舉足輕重的影響。日本和光著眼于巨噬細胞的外泌體受體Tim4蛋白，制備Tim4細胞外域與磁珠結合的“Tim4磁珠”。外泌體是胞內還是胞外

外泌體(exosomes)是一類由細胞分泌到胞外的囊泡。與其他兩種胞外囊泡(微囊泡和凋亡小體)相比，外泌體在產生方式、尺寸、密度和內容物等方面存在明顯差異。不同于微囊泡“出芽”的形成方式，外泌體主要通過胞吐過程釋放至細胞外:首先細胞膜向內凹陷形成早期核內體(earlyendosomes)，早期核內體進一步內陷形成多泡體(multivesicularbodies，MVBs)，其中一部分多泡體與溶酶體(lysosome)融合，進而降解;另一部分與細胞膜融合，將其內部所包含的囊泡釋放至胞外，即為外泌體。外泌體具有獨特的物理化學性質，其直徑為30～200nm，密度為1.13～1.19g/mL，組成包括細胞來源相關的脂質、蛋白質、RNA、DNA等物質，在其表面連接有大量的糖鏈，如甘露糖、聚乳糖胺和α2，6-唾液酸等。外泌體是胞內還是胞外確認外泌體生理作用的單獨方法就是明確外泌體的釋放機制，通過促進或壓制釋放機制。

獲得囊泡粒徑分布的兩種方法動態光散射(DLS)和納米顆粒跟蹤分析(NTA)都被廣fan應用于外泌體顆粒數目和粒徑分布的測量，但兩種方法也各有不足。動態光散射法中散射光強度依賴于顆粒質量(體積)，混合體系中大囊泡的存在(即使只有很少的量)將嚴重影響測量結果，因此動態光散射法更適用于單分散體系。而且動態光散射法所得的結果強烈依賴于所應用的數學算法。而采用納米顆粒跟蹤分析儀對不同粒徑范圍的囊泡進行檢測時，為了得到準確的濃度和粒徑信息，需要根據所要測量的顆粒粒徑范圍對儀器分別校準，操作繁瑣。受檢測靈敏度所限，納米顆粒跟蹤分析儀適用于粒徑范圍50nm～1μm的顆粒，粒徑小于50nm的外泌體無法檢測。除此之外，兩種方法都依賴光散射和粒子的布朗運動進行分析，難以區分合成的納米材料、大蛋白質聚合體和生物囊泡。

外泌體（Exosome），是細胞外囊泡（EV）的一種主要類型，是直徑為30至150nm的納米大小的膜結構，大多數細胞都會分泌外泌體。外泌體存在于各種生物體液中，通過其攜帶的蛋白質、核酸、脂質和代謝物等來發揮細胞間通訊功能，參與免疫應答、代謝和心血管疾病、神經退行性疾病以及病癥進展等多種生理和病理過程。在內體轉變為成熟多囊泡內體（MVE）的過程中，內體膜向腔內出芽形成腔內囊泡（ILV），MVE與細胞膜融合釋放ILV到細胞外，即形成外泌體。干細胞外泌體通過改變細胞外基質，改變受體細胞的轉錄組和蛋白質組，調節細胞凋亡，生長，增殖和分化途徑。

Vlassov等人發表的一篇外泌體的提取方法及組成的專利文獻中介紹，通過終濃度為8%的PEG6000與生物體液共孵育14h后，10000xg離心1h，可將直徑在30-150nm之間，且包含豐富RNA的外泌體沉淀下來。因此采用終濃度為8%的PEG6000沉淀血清中的外泌體，為了進一步純化胎盤相關外泌體，將獲得的包含外泌體的沉淀用PBS重新懸浮后，加入非線性蔗糖密度梯度層，10000xg超速離心5h，將分層液采用PEG6000進行2次沉淀。經過多次實驗反復驗證，確定同時表達外泌體標志蛋白分子及胎盤特異性蛋白分子的胎盤來源外泌體所在密度層。外泌體給后續實驗產生了許多障礙。外泌體是胞內還是胞外

血液中的成纖維細胞所釋放的外泌體，可以促進角質形成細胞的移動和增殖以及血管新生來促進傷口愈合。外泌體是胞內還是胞外

有研究表明外泌體通過喚醒瘤相關信號通路、誘導免疫耐受、重塑細胞外基質、增強瘤細胞侵襲性和調控瘤微環境促進瘤的發生和發展，外泌體在瘤的診斷上有諸多優勢：外泌體可保護其中的核酸類物質，防止其迅速降解；外泌體的形成與親源細胞的狀態密切相關；針對外泌體內容物的檢測比傳統的瘤標志物更具有特異性；外泌體寬泛存在于多種體液樣本中，以其為基礎的瘤診斷可在病情發展過程中及時監測分子標志物的變化，這種檢測更易監控且樣本更易收集。外泌體是胞內還是胞外