膜片鉗又稱單通道電流記錄技術，用特制的玻璃微吸管吸附于細胞表面，使之形成10～100的密封(giga-seal)，又稱巨阻封接，被孤立的小膜片面積為μm量級，內中只有少數離子通道。然后對該膜片實行電壓鉗位，可測量單個離子通道開放產生的pA（10的負12次方安培）量級的電流，這種通道開放是一種隨機過程。通過觀測單個通道開放和關閉的電流變化，可直接得到各種離子通道開放的電流幅值分布、開放幾率、開放壽命分布等功能參量，并分析它們與膜電位、離子濃度等之間的關系。還可把吸管吸附的膜片從細胞膜上分離出來，以膜的外側向外或膜的內側向外等方式進行實驗研究。這種技術對小細胞的電壓鉗位、改變膜內外溶液成分以及施加藥物都很方便。膜片鉗使用的注意事項：打雷天氣必須禁止膜片鉗實驗。無錫藥理學膜片鉗電生理技術

電壓鉗與膜片鉗有什么區別？電壓鉗技術是通過向細胞內注射一定的電流，抵消離子通道開放時所產生的離子流，從而將細胞膜電位固定在某一數值。由于注射電流的大小與離子流的大小相等、方向相反，因此它可以反映離子流的大小和方向。膜片鉗技術鉗制的是膜片，是指采用尖銳端經過處理的微電極與細胞膜發生緊密接觸，使尖銳端下的這片細胞膜在電學上與其它細胞膜分離，這很大程度降低了背景噪聲，使單通道微弱的電流得以分辨出來。采用電壓鉗技術將這片膜的電位鉗制在某一數值，可記錄到單通道電流。從這點上看，膜片鉗技術是特殊的電壓鉗技術。隨著膜片鉗技術的發展，它已經不只只局限于膜片的概念，也不只只采用電壓鉗技術，還常采用電流鉗技術。無錫藥理學膜片鉗電生理技術使用膜片鉗全細胞記錄技術觀察拮抗劑對煙堿受體激動劑量效曲線的影響，來確定其作用的動力學特征。

膜片鉗使用的注意事項：1.為了防止塵埃、靜電傷害機器，每天做實驗前請用清水拖地。2.拉制儀使用前需預熱15-30min。3.銀絲電極及地線發白時，請先用砂紙輕微打磨，再浸入新鮮的次氯酸鈉溶液鍍氯化銀，如果銀絲電極30min未變黑，則考慮更換次氯酸鈉。4.先開放大器，后開軟件；先關軟件，后關放大器。5.非必須用到汞燈時請不要打開汞燈電源，打開后至少需1個小時才可關閉。6.在放大器打開時不能用手、金屬物品或其它導電的物品接觸電極絲（包括地線），在取放細胞片時請關閉放大器。膜片鉗技術用特制的玻璃微吸管吸附于細胞表面，使之形成10~100MΩ的高阻封接，被孤立的小膜片面積為微米數量級，因此封接范圍內細胞膜光有少數離子通道。

膜片鉗電生理技術服務實驗流程之電機制備和實驗的記錄和分析數據：電極制備：膜片微電極是將玻璃毛細管用電極拉制儀拉制而成的，主要分為以下步驟：拉制：膜片微電極是將玻璃毛細管用拉管儀拉制而成。涂硅酮樹酯：將硅酮樹酯涂于微電極的較尖銳端以外的部分，然后將其通過加熱鎳鉻電阻線圈而烘干變固。熱刨光：在顯微鏡下，將微電極尖銳端接近熱源進行熱刨光處理可提高巨阻抗封接的成功率。充灌微電極液：用于灌充微電極的液體需經為空濾膜過濾，除去妨礙巨阻抗封接形成的灰塵。進行實驗，記錄和分析數據：準備工作就緒后即可進行實驗操作，數據記錄和分析。膜片鉗系統有如下應用局限性：大部分是工具細胞如化細胞。

膜片鉗技術是一種記錄通過離子通道的離子電流來反映細胞膜上離子通道分子活動的技術。是用來研究單個離體的活細胞、組織切片或細胞膜片離子流的電生理實驗技術。這項技術在可興奮細胞如神經元、心肌細胞、肌纖維和胰腺細胞的研究中起至關重要的作用，也可用于研究特殊制備的巨型球狀體中的細菌離子通道。傳統膜片鉗技術對實驗人員的技術要求非常高，一般地，實驗人員需要經過嚴格的長期的訓練，才能準確且快速的操作。膜片鉗技術是用于紀錄全細胞或個別細胞膜上離子信道電生理特性的研究方法膜片鉗技術是電生理記錄的常用手段，目前在科學研究中使用越來越普遍。無錫藥理學膜片鉗電生理技術

膜片鉗使用操作注意：在儀器使用以前及使用之后按按照使用時長做好登記工作。無錫藥理學膜片鉗電生理技術

膜片鉗使用的注意事項：工作原理膜片鉗是一種能夠直接觀察單一的離子通道蛋白質分子對相應離子通透難易程度等特性的一種實驗技術。它的基本原理是以一個光潔，直徑約為0.5~3um的玻璃微電極同神經或肌細胞的膜接觸，之后對微電極另一端開口處施加適當的負壓用電極的纖細開口將與電極接觸的那一小片膜輕度吸入，如此在微電極開口處的玻璃邊沿以及這一小片膜周邊會形成緊密的封接，它的電阻能夠達到數個或數十個千兆歐，這世界上就是在化學上完全隔離了吸附在微電極開口處的那一片膜同膜的其余部分，通過微電極記錄到的電流變化光光和該膜片中通道分子的功能狀態相關聯。膜片鉗技術用特制的玻璃微吸管吸附于細胞表面，使之形成10~100MΩ的高阻封接，被孤立的小膜片面積為微米數量級，因此封接范圍內細胞膜光有少數離子通道。無錫藥理學膜片鉗電生理技術

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