取材的基本要求和注意事項(xiàng)敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功，取材時(shí)應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞，盡快入箱培養(yǎng)，若不能即時(shí)培養(yǎng)，應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi)，于4℃存放。若組織塊較大，應(yīng)在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后，切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放，但時(shí)間不能超過(guò)24h。對(duì)于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基，按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應(yīng)嚴(yán)格無(wú)菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無(wú)菌條件下進(jìn)行，為了確保無(wú)菌，對(duì)所取材料若疑有污染的可能，應(yīng)將所取組織在含高濃相關(guān)研究工作已經(jīng)揭示了生長(zhǎng)培養(yǎng)基必須包含的基本成分。廈門(mén)原代細(xì)胞分離試劑盒哪里買

原代細(xì)胞轉(zhuǎn)染操作步驟（以24孔培養(yǎng)板為例）：A.細(xì)胞接種：轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在接種細(xì)胞，每孔500μl培養(yǎng)基（不可加物品），使細(xì)胞在轉(zhuǎn)染時(shí)密度在30-50%。B.siRNA-RFectPM混合物準(zhǔn)備：1.6pmolsiRNA用50μl無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋。2.2μlRFectPM用50μl無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋。輕輕混勻，室溫孵育5min。注意：確保在25min內(nèi)執(zhí)行第三步操作，不要過(guò)于延遲。3.孵育5min后，將siRNA稀釋液與RFectPM稀釋液混合（總體積100μl）。輕輕混勻，室溫孵育20min。C.將混合物加到培養(yǎng)的細(xì)胞內(nèi)（完全培養(yǎng)基培養(yǎng)）：1.將100μl混合物加入培養(yǎng)孔內(nèi)，培養(yǎng)孔內(nèi)含有0.5ml培養(yǎng)的細(xì)胞。輕輕晃動(dòng)培養(yǎng)板，混勻。2.37°C培養(yǎng)18-72h，檢測(cè)基因克制效果。如果需要，細(xì)胞培養(yǎng)4-6h時(shí)可以更換培養(yǎng)基，但不是必須。孵育時(shí)間的長(zhǎng)短，取決于細(xì)胞類型、所干擾基因本身及分析方法。可設(shè)置不同的孵育時(shí)間進(jìn)行實(shí)驗(yàn)以確定較佳孵育時(shí)間。轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)優(yōu)化:為了提高轉(zhuǎn)染效率，較好對(duì)轉(zhuǎn)染條件進(jìn)行優(yōu)化，特別是開(kāi)始使用。廈門(mén)原代細(xì)胞分離試劑盒哪里買很適合用于藥物測(cè)試、細(xì)胞分化和轉(zhuǎn)化等實(shí)驗(yàn)研究。

原代細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)：1.收到細(xì)胞時(shí)，要鏡下觀察是否有污染情況；收到細(xì)胞的前幾天，要做好各種倍數(shù)的鏡下拍照記錄，以防細(xì)胞出現(xiàn)問(wèn)題后，可以跟公司很好地溝通。2.收到細(xì)胞后，不要馬上處理。應(yīng)置于培養(yǎng)箱中靜置4h以上再操作。如果不著急，可靜置過(guò)夜。3.細(xì)胞的靠前次傳代，一定要密度高一些傳代，原代細(xì)胞傳代密度低，很難長(zhǎng)起來(lái)。建議1:2-1:3傳代。4.原代細(xì)胞傳代時(shí)（內(nèi)皮細(xì)胞，貼壁為例），0.25%+0.53nM的胰酶消化，1ml消化液37度培養(yǎng)箱內(nèi)消化30sec，再加入5ml培養(yǎng)基（正常消化貼壁細(xì)胞，我們使用胰酶和培養(yǎng)基的量是1:1，但是原代細(xì)胞必須用大量培養(yǎng)基中和胰酶）。5.原代細(xì)胞不建議凍存，因?yàn)閮龃婧苋菀讖?fù)活不成功。如果要凍存的話，建議在P2或P3代凍存，凍存液中的血清越多越好，建議比例9（血清）:1（DMSO）。6.原代細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，置于37-38度水浴融化細(xì)胞，并加入10ml培養(yǎng)液（正常貼壁細(xì)胞復(fù)蘇時(shí)，也可以使用這種比例，復(fù)蘇成活率會(huì)較大提高），離心重懸鋪板。

分散細(xì)胞培養(yǎng)大致步驟為：將動(dòng)物組織從機(jī)體中取出離散成單個(gè)細(xì)胞(常用胰蛋白酶)，置合適的培養(yǎng)基中培養(yǎng)，使細(xì)胞得以生存、生長(zhǎng)和繁殖(注意整個(gè)過(guò)程無(wú)菌)。原代培養(yǎng)：當(dāng)采用外科操作的方法將細(xì)胞從有機(jī)體中分離下來(lái)，然后置于合適的培養(yǎng)環(huán)境中，它們會(huì)附著、分裂和生長(zhǎng)。這稱為原代培養(yǎng)。原代培養(yǎng)有兩種基本的方法。靠前種，使用外植塊，將小片的組織粘附到玻璃或經(jīng)處理的塑料培養(yǎng)瓶中，并浸于培養(yǎng)液中。幾天之后，單個(gè)細(xì)胞將從組織外植塊中移動(dòng)到培養(yǎng)瓶的表面或基質(zhì)中開(kāi)始分裂生長(zhǎng)。第二種方法，也是使用更普遍的方法，通過(guò)在組織碎片中加入消化（蛋白水解）酶，如胰酶或膠原酶，消化成團(tuán)聚集的細(xì)胞從而加快這一步驟。得到單細(xì)胞的懸液，然后將其置于含有培養(yǎng)液的細(xì)胞培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)，讓其繼續(xù)生長(zhǎng)分裂。這種方法成為酶解。取樣后培養(yǎng)時(shí)間較少需要一周以上的時(shí)間，期間可換液或者傳代。

細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)及常見(jiàn)問(wèn)題解答：傳代1、貼壁細(xì)胞傳代時(shí)，先用消化液潤(rùn)洗一遍；棄掉后，再加入適量消化液置于孵箱或鏡下觀察消化；當(dāng)細(xì)胞變圓，彼此之間產(chǎn)生空隙，加入等量或大量的培養(yǎng)基終止消化，培養(yǎng)基中的血清可以克制胰蛋白酶的活性。2、這里我沒(méi)有明確提到胰蛋白酶的濃度，并不是說(shuō)濃度越高越好。胰蛋白酶底物的特異性差，會(huì)破壞細(xì)胞膜成分。PH8.0，37度環(huán)境下，消化液的消化能力是較強(qiáng)的。培養(yǎng)基中的血清會(huì)降低胰酶的消化能力，所以每次消化前，也要用PBS反復(fù)沖洗干凈培養(yǎng)皿。日常用的比較多的消化液濃度：a)0.25%胰蛋白+0.02%EDTA。并且培養(yǎng)基中需包含細(xì)胞類型特定的營(yíng)養(yǎng)因子、生長(zhǎng)因子、葡萄糖和/或物品。南京正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒價(jià)格

用專門(mén)的原代細(xì)胞培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)，較大限度提高原代細(xì)胞的生長(zhǎng)。廈門(mén)原代細(xì)胞分離試劑盒哪里買

原代細(xì)胞的獲?。好赶ǎ核迷噭耗z原酶和胰酶。膠原酶的配制：建議看相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進(jìn)行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內(nèi)預(yù)熱（注意現(xiàn)用現(xiàn)配）。胰酶（酶聯(lián)合法獲取原代細(xì)胞中會(huì)加入胰酶，相關(guān)文章也蠻多的）膠原酶消化時(shí)間：根據(jù)組織特性，消化時(shí)間會(huì)有差異。以小鼠腎細(xì)胞為例，加入膠原酶Ⅰ進(jìn)行消化后，放入37℃培養(yǎng)箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細(xì)小，時(shí)間可以短一些，30min左右即可）。廈門(mén)原代細(xì)胞分離試劑盒哪里買