原代細胞傳代培養方法：1.當細胞達到80-90%融合時需要傳代培養。2.提前準備好多聚賴氨酸（PLL，貨號0403）或纖維粘連蛋白（BPF，貨號8248）包被好的培養瓶。3.將完全培養基，胰酶/EDTA消化液（T/E，貨號0103），胰胰中和液（TNS，貨號0113）和不含鈣鎂離子的DPBS（貨號0303）加熱至室溫。我們不推薦用37度水浴加熱試劑和培養基。4.用DPBS沖洗細胞。5.以T-75培養瓶為例，向培養瓶中加入8mlDPBS，然后加入2ml胰酶/EDTA消化液。輕輕搖動培養瓶保證細胞被胰酶/EDTA消化液完全覆蓋。將培養瓶置于37度培養箱1-2分鐘直到細胞變圓。在顯微鏡下觀察細胞形態變化。6.在消化期間，準備一支50ml離心管加入5ml胎牛血清（FBS，貨號0500）較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質。鄭州原代細胞分離試劑盒哪家便宜

原代細胞的基本結構及作用：1.細胞壁（CellWall）【動物細胞沒有】位于植物細胞的外層,是一層透明的薄壁。它主要是由纖維素和果膠組成的，孔隙較大，物質分子可以自由透過。細胞壁對細胞起著支持和保護的作用。2.細胞膜（CellMembrane)細胞壁的內側緊貼著一層極薄的膜，叫做細胞膜。這層由蛋白質分子和磷脂雙層分子組成的薄膜，水和氧氣等小分子物質能夠自由通過，而某些離子和大分子物質則不能自由通過，因此，它除了起著保護細胞內部的作用以外，還具有控制物質進出細胞的作用：既不讓有用物質任意地滲出細胞，也不讓有害物質輕易地進入細胞蕪湖正規原代細胞分離試劑盒廠家批發價它們產生的有毒物質會影響原代細胞的生長。

原代細胞培養問題：1、細胞培養過程中，多久更換一次培養基這取決于細胞生長的速度。一般而言2-3天更換一次培養基，許多細胞培養實驗室通常在周一，周三，周五更換培養基。注意：凍存細胞復蘇后，在6-16小時內更換培養基，以去除殘留的二甲基亞楓和死亡的細胞。2、我能擴增培養和再次凍存原代正常人類細胞嗎？這取決于細胞的類型。一些細胞類型像神經細胞，神經膠質細胞和一些生長緩慢的上皮細胞，不推薦擴增培養和再次凍存。其它的細胞類型像成纖維細胞、星形細胞、腎系膜細胞、星形膠質細胞等等，可以擴增培養和再次凍存。然而，需要注意的是再次凍存的過程可能導致細胞生長性能的改變。

膠原酶的配制：建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱（注意現用現配）。胰酶（酶聯合法獲取原代細胞中會加入胰酶，相關文章也蠻多的）膠原酶消化時間：根據組織特性，消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例，加入膠原酶Ⅰ進行消化后，放入37℃培養箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細小，時間可以短一些，30min左右即可）。原代細胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶只用于某些特定的細菌如豬傳染性腸胃炎細菌的培養。

細胞凍存：通常我們不推薦重新凍存原代細胞，因為這可以促進細胞衰老和/或導致功能變化。原代細胞非常敏感，重新凍結可能導致細胞死亡或損傷。與細胞系不同，原代細胞增殖有限，我們建議盡早使用原代細胞進行實驗以防止遺傳漂移，如果你正在使用一個增殖困難的細胞類型，你應該密切監測細胞形態，因為少量混雜的細胞（如成纖維細胞）可能隨著時間的推移，大量生長從而成為主要細胞。正常的原代細胞培養，在無污染的情況下，建議培養基中不加抗體，抗體會影響細胞的某些基因變異從而導致實驗數據有差異，所以cellsystems的細胞在分離提取時就考慮到這點，他們不會采用任何抗體去分離和純化的同時，通過酶消化或者離心洗滌的方法讓細胞達到95%以上的純度，這樣得到的實驗數據更為準確~以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。合肥原代細胞分離試劑盒哪里買

用70％的酒精沖洗凍存管，然后擦去多余酒精。鄭州原代細胞分離試劑盒哪家便宜

原代細胞培養注意事項：原代內皮細胞提取：1)整個操作要在潔凈通風的超凈臺下進行，所有的器材要高壓消毒。2)根據BALB/c小鼠的體重，用10ml/kg3%濃度的戊巴比妥鈉麻醉；將小鼠置于盛有75%乙醇的燒杯內，這一步不僅可以消毒，也可以讓小鼠體毛浸濕，后續剃去皮毛的時候不會沾到剪刀或組織上。3)用鑷子輕輕挑起小鼠的心臟，裝有PBS的注射器插入心尖，同時在右心耳處剪開一個小口，緩慢推動注射器，隨著心臟的跳動，將體內的血液沖洗出來。4)取出小鼠的肺部組織，將肺組織切成小米粒樣的大小，置于預冷的HBSS中反復沖洗幾次。5)將小米粒大小的肺組織置于培養瓶中（培養瓶前現在用1%明膠溶液包被培養面，4度過夜，小鼠處理前，將培養瓶放置培養箱中，使其溫度恢復至37度），置于培養箱37度的環境下，消化4個小時。鄭州原代細胞分離試劑盒哪家便宜