PCR的反應條件：dNTP濃度過高會加快反應速度，但同時還可以增加堿基的錯誤摻入率。引物濃度過高會引起錯配和非特異性產物擴增。TaqDNA聚合酶濃度過高會引起錯配和非特異性產物擴增，低則合成產物量減少。TaqDNA聚合酶無校正功能，摻入錯誤率達2*E-4個核苷酸，一個30個循環的擴增反應0.1%-0.25%總錯誤率。在90～95度下可使整個基因組的DNA變性為單鏈。一般94～95度30～60s。時間過長使TaqDNA聚合酶失活和dNTP破壞增多。DNA很快冷卻到40～60度使引物和模板結合。引物長度在15～25時退火溫度。熱啟動/冷完成聚合酶鏈反應是通過新的雜合聚合酶實現的，這些酶在環境溫度下不活躍。武漢組織數字PCR服務

聚合酶鏈反應有許多優點。它很容易理解和使用，并迅速產生結果。這項技術非常敏感，有可能產生數百萬到數十億份特定產品的拷貝，用于測序、克隆和分析。qRT-PCR具有與PCR相同的優點，同時還具有定量合成產物的優點。因此，它可以用于分析病癥、微生物或其他疾病狀態中基因表達水平的變化。聚合酶鏈反應是一種非常強大和實用的研究工具。許多疾病的未知病因的測序正在通過聚合酶鏈反應得到解決。這項技術可以幫助我們識別與已知病毒相關的未知病毒序列，從而讓我們更好地了解疾病本身。如果該過程可以進一步簡化，并且可以開發靈敏的非輻射檢測系統，PCR將在未來幾年在臨床實驗室中占據明顯地位。武漢組織數字PCR服務流聚合酶鏈反應將溶液置于熱梯度下，而不是反復加熱和冷卻聚合酶鏈反應混合物。

聚合酶鏈式反應的試驗污染：陽性對照：在建立PCR反應實驗室及一般的檢驗單位都應設有PCR陽性對照，它是PCR反應是否成功、產物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標志。陽性對照要選擇擴增度中等、重復性好，經各種鑒定是該產物的標本，如以重組質粒為陽性對照，其含量宜低不宜高（100個拷貝以下）。但陽性對照尤其是重組質粒及高濃度陽性標本，其對檢測或擴增樣品污染的可能性很大。因而當某一PCR試劑經自己使用穩定，檢驗人員心中有數時，在以后的實驗中可免設陽性對照。陰性對照：每次PCR實驗務必做陰性對照。它包括：標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定后的正常血清作對照；被檢的標本是組織細胞就用相應的組織細胞作對照。試劑對照：在PCR試劑中不加模板DNA或RNA,進行PCR擴增，以監測試劑是否污染。

聚合酶鏈反應也可以用作以下敏感試驗的一部分組織分型，對移植至關重要。截至2008年，甚至有人提議用聚合酶鏈反應檢測取代傳統的血型抗體檢測。許多形式的病癥涉及致病基因的改變。通過使用基于聚合酶鏈反應的測試來研究這些突變，醫治方案有時可以根據患者的不同而不同。聚合酶鏈反應可以早期診斷惡性疾病，如白血病和淋巴瘤，這是目前病癥研究中發展很快的，并且已經被常規使用。PCR檢測可以直接在基因組DNA樣品上進行，以檢測易位特異性惡性細胞，其靈敏度至少是其他方法的10，000倍。聚合酶鏈反應在醫學領域非常有用，因為它允許分離和擴增病癥抑制劑。例如，定量PCR可以用于量化和分析單細胞，以及識別DNA、mRNA和蛋白質的確認和組合。PCR的另一個限制是，即使是很少量的污染DNA也可以被擴增，導致誤導或模糊的結果。

聚合酶鏈式反應：模板的制備，PCR的模板可以是DNA，也可以是RNA。模板的取材主要依據PCR的擴增對象，可以是病原體標本如病毒、細菌、菌類等。也可以是病理生理標本如細胞、血液、羊水細胞等。法醫學標本有血斑、精斑、毛發等。標本處理的基本要求是除去雜質，并部分純化標本中的核酸。多數樣品需要經過SDS和蛋白酶K處理。難以破碎的細菌，可用溶菌酶加EDTA處理。所得到的粗制DNA，經酚、氯仿抽提純化，再用乙醇沉淀后用作PCR反應模板。序列間特異性聚合酶鏈反應是一種用于DNA指紋識別的聚合酶鏈反應方法。武漢組織數字PCR服務

聚合酶鏈反應非常敏感，有可能產生數百萬到數十億份特定產品的拷貝，用于測序、克隆和分析。武漢組織數字PCR服務

聚合酶鏈式反應的特點：靈敏度高：PCR產物的生成量是以指數方式增加的，能將皮克(pg=10-12）量級的起始待測模板擴增到微克（μg=-6）水平。能從100萬個細胞中檢出一個靶細胞；在病毒的檢測中，PCR的靈敏度可達3個RFU(空斑形成單位）；在細菌學中很小檢出率為3個細菌。簡便、快速：PCR反應用耐高溫的Taq DNA聚合酶，一次性地將反應液加好后，即在DNA擴增液和水浴鍋上進行變性-退火-延伸反應，一般在2～4 小時完成擴增反應。擴增產物一般用電泳分析，不一定要用同位素，無放射性污染、易推廣。純度要求低：不需要分離病毒或細菌及培養細胞，DNA 粗制品及RNA均可作為擴增模板。可直接用臨床標本如血液、體腔液、洗嗽液、毛發、細胞、活組織等DNA擴增檢測。武漢組織數字PCR服務

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