HE染色知識點1：對送檢組織標本的要求送檢組織標本在手術切除或活檢后應當立即放入4%中性緩沖甲醛溶液中固定。尸檢標本應當盡量在死亡后盡早取材固定。送檢組織需要全部取材的，應當在送檢單上注明，有特殊要求（如細菌培養、解釋道化學分析等）應當事先聯系，并且在標本未固定前進行處理。知識點2：組織取材要求在對送檢組織標本進行詳細檢查的基礎上，根據診斷的需要，確定取材的部位和塊數。切取的組織應當按照不同的部位分別給予不同的編號或標記，以便鏡檢時核對。另外，盡可能在取材前對有意義的標本的表面及剖面鏡下攝影，并編號存檔南京英瀚斯，專業的病理染色實驗服務平臺。HE染色，南京英瀚斯，專業的實驗外包公司。上海HE染色外包

HE染色細胞質過染分析及應對原因：（1）伊紅染色液濃度太高，特別是焰紅燃料、四溴四氯熒光素鈉的存在；（2）切片在伊紅染色時間過長；（3）切片在伊紅染色后經乙醇脫水步驟時過的太快，而使乙醇分化伊紅的作用不能產生。對策：適當稀釋伊紅染色液，減少伊紅染色時間，或者使切片在乙醇脫水等步驟時，停留時間相對均勻。同樣，也要檢查切片的厚度是否合適。切片中出現藍黑色沉淀物分析及應對原因：蘇木精染色液中的金屬膜，黏附在玻片上。對策：每天染色前仔細過濾蘇木精染色液，或建議使用半氧化蘇木精染色液，如Gill蘇木精染色液,可以避免過多的金屬膜產生。上海HE染色外包HE染色結果如何分析和讀片？

HE染色觀察細胞凋亡，凋亡檢測中形態學方法是**直觀、可靠的方法之一。對組織和各種細胞進行染色后，在光學顯微鏡、熒光顯微鏡或電子顯微鏡下觀察，通過觀察細胞的形態或染色的類型來判斷凋亡的發生與否。細胞涂片或細胞甩片的制備：對于貼壁細胞，可將蓋玻片放于培養器皿中，讓培養細胞長于玻片上，然后用藥物誘導細胞凋亡后取出，用4%多聚甲醛固定5min。對于懸浮細胞，用藥物誘導細胞凋亡后，離心1000r/min收集細胞，用PBS洗2次，收集調整細胞數為1X105/ml，涂片或用離心甩片，用4%多聚甲醛固定5min；在光學顯微鏡下，貼壁細胞由原來的梭形或多角形變小、變圓，核呈藍色或藍黑色，胞漿呈淡紅色，核固縮、破碎，形成凋亡小體等。懸浮細胞，整個細胞皺縮，核固縮，破碎，形成凋亡小體，染色質顏色加深等。

HE染色是目前國內外病理診斷上***采用的常規染色方法。切片質量的好壞，可直接影響疾病診斷的及時與準確性。因此，能制作出一張高質量的HE染色切片，是必須掌握的技術之一。送檢樣本經4%多聚甲醛固定，固定狀態良好后，嚴格按照本單位病理實驗檢測SOP程序進行修剪、脫水、包埋、切片、染色、封片***鏡檢合格的樣片。在顯微鏡下瀏覽切片或瀏覽數字切片，在不同倍數下詳細觀察組織切片情況，對切片中基本病理改變如充血、淤血、出血、水腫、變性、壞死、增生、纖維化、機化、肉芽組織、炎性變化等情況文字描述，并反映出片子之間的差異。對典型病變部位成像并在word文檔中用箭頭標識。什么是HE染色，HE染色實驗的目的。

HE染色注意事項：1、染色時調節pH值很重要。如果組織塊在福爾馬林中固定時間長，組織酸化而影響細胞核著色。因此，要在自來水中沖洗時間長一些或在飽和碳酸鋰水溶液中處理10-30min，這樣可以使細胞核著色較深。染伊紅時胞漿著色不佳，可在伊紅溶液中滴加1-2滴冰醋酸。2、切片染蘇木精后，分色這一步是關鍵，應在顯微鏡下控制進行，一般以細胞核染色清楚（晰）而細胞質基本無色為佳。如果過分延長分色時間將導致染色太淺，應重新染色后再行分色。3、切片經酒精脫水后，入二甲苯時可出現白色不透明狀態，此為脫水不徹底，應將切片退回無水酒精，更換酒精、二甲苯，以求徹底脫水與透明。4、在染色過程中不要讓切片干燥，以免切片收縮、變形，影響神經元形態。5、切片從二甲苯取出或進入二甲苯前，切片周邊均應擦干凈或吸干多余水分。6、***封固時，要用中性樹脂，防止日后褪色，蓋片要選大于組織塊的面積，如漏出一部分不久將會褪色，所用樹脂濃度要適當，樹脂封固時不能有氣泡。科研常備實驗操作之HE染色。安徽性價比高的HE染色報告

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HE染色不管怎么操作，始終無法染色或淡染答：這種情況一般因為組織固定時采用了酸性甲醛;或者組織在甲醛中浸泡時間太長;或者久置的甲醛變性分解為甲酸。補救：防患于未然，要么使用新鮮的中性甲醛固定，要么在存放的甲醛中加一點碳酸鈉中和甲酸。對于已經固定的組織可考慮再次固定；對于已經制出的片子，染色前采用5%重鉻酸鉀溶液浸泡半小時以上，然后自來水漂洗5min，可改善染色。也可以將切片放入3%硫酸鐵銨溶液中，補充染色媒介，增強蘇木素與組織的親和力(蘇木素染色必須要媒介才能染上，單純的蘇木素與組織的親和力很弱)。上海HE染色外包