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莆田微量PCR檢測技術技術服務

來源: 發布時間:2022年09月17日

聚合酶鏈反應:在檢測病原體方面,病原體培養是臨床診斷的金標準 .但是對于一些苛養菌 生長緩慢的細菌或難以培養的病原體等培養的陽性檢出率不高.檢測時間過長 無法滿足臨床早期快速診斷以指導醫治的需要[3]。當前 PCR 技術是在傳統 PCR 技術應用的基礎上進行的改進,包括實時定量 PCR 技術 、 實時熒光定量PCR、 PCR-酶聯免疫吸附試驗 、 巢式PCR等。 在PCR技術的輔助作用下,實驗室檢測也逐漸從生化免疫診斷過渡到基因診斷,生化免疫檢測主要從表型表現評估病癥,而基因診斷則深入本質探究其病因,以PCR 技術為主的核酸技術在臨床實驗室檢測與疾病診斷中表現出了明顯的應用價值,在未來的臨床醫學檢驗中必將會得到更加較廣的應用。聚合酶鏈式反應的模板的取材主要依據PCR的擴增對象,可以是病原體標本如病毒、細菌、菌類等。莆田微量PCR檢測技術技術服務

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聚合酶鏈式反應:反應的控制:PCR反應的緩沖液 提供合適的酸堿度與某些離子;鎂離子濃度 總量應比dNTPs的濃度高,常用1.5mmol/L;底物濃度 dNTP以等摩爾濃度配制,20~200umol/L;TaqDNA聚合酶 2.5U(100ul);引物濃度一般為0.1 ~ 0.5umol/L;反應溫度和循環次數;變性溫度和時間 95℃,30s;退火溫度和時間 低于引物Tm值5 ℃左右,一般在45~55℃;延伸溫度和時間 72℃,1min/kb(10kb內);Tm值=4(G+C) +2(A+T);循環次數 :一般為25 ~ 30次。循環數決定PCR擴增的產量。模板初始濃度低,可增加循環數以便達到有效的 擴增量。但循環數并不是可以無限增加的。一般循環數為30個左右,循環數超過30個以后,DNA聚合酶活性逐漸達到飽和,產物的量不再隨循環數的增加而增加,出現了所謂的“平臺期”。莆田微量PCR檢測技術技術服務聚合酶鏈式反應:DNA的半保留復制是生物進化和傳代的重要途徑。

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聚合酶鏈式反應的步驟:標準的PCR過程分為三步:DNA變性:(90℃-96℃):雙鏈DNA模板在熱作用下,氫鍵斷裂,形成單鏈DNA;退火:(60℃-65℃):系統溫度降低,引物與DNA模板結合,形成局部雙鏈。延伸:(70℃-75℃):在Taq酶(在72℃左右,活性很好)的作用下,以dNTP為原料,從引物的3′端開始以從5′→3′端的方向延伸,合成與模板互補的DNA鏈。每一循環經過變性、退火和延伸,DNA含量即增加一倍。現在有些PCR因為擴增區很短,即使Taq酶活性不是很好也能在很短的時間內復制完成,因此可以改為兩步法,即退火和延伸同時在60℃-65℃間進行。

聚合酶鏈反應允許快速生產短DN段,即使已知的引物序列不超過兩個。聚合酶鏈反應的這種能力增強了許多方法,例如生成雜交 探針用于 Southern 或northern blot 雜交。聚合酶鏈反應為這些技術提供了大量的純DNA,有時是單鏈的,甚至可以從非常少量的起始材料中進行分析。脫氧核糖核酸測序的任務也可以通過聚合酶鏈反應來輔助完成。已知的DN段可以很容易地從患有遺傳疾病突變的患者體內產生。對擴增技術的修飾可以從完全未知的基因組中提取片段,或者可以產生感興趣區域的單鏈。聚合酶鏈反應有許多應用于傳統的 DNA克隆。它可以從更大的基因組中提取片段以插入載體,這可能只有少量可用。使用一組“載體引物”,它還可以分析或提取已經插入載體的片段。聚合酶鏈反應方案的一些改變可以產生突變(通用的或定點的)插入片段。嵌套聚合酶鏈反應的兩組引物用于兩個連續的PCR。

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聚合酶鏈式反應的常見問題:出現非特異性擴增帶:PCR擴增后出現的條帶與預計的大小不一致,或大或小,或者同時出現特異性擴增帶 與非特異性擴增帶。非特異性條帶的出現,其原因:一是引物與靶序列不完全互補、或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低,及PCR循環次數過多有關。其次是酶的質和量,往往一些來源的酶易出現非特異條帶而另一來源的酶則不出現,酶量過多有時也會出現非特異性擴增。其對策有:必要時重新設計引 物。減低酶量或調換另一來源的酶。降低引物量,適當增加模板量,減少循環次數。適當提高退火溫度或采用二溫度點法(93℃變性,65℃左右退火與延伸)。聚合酶鏈式反應可看作是生物體外的特殊DNA復制。莆田微量PCR檢測技術技術服務

聚合酶鏈式反應的引物與模板的結合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。莆田微量PCR檢測技術技術服務

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