HE染色全名為蘇木精和伊紅染色方法，是**基本的病理學染色技術。由于組織或細胞的不同成分對蘇木精的親和力不同及染色性質不一樣。經蘇木精染色后，細胞核及鈣鹽粘液等呈藍色，可用鹽酸酒精分化和弱堿性溶液顯藍，如處理適宜，可使細胞核著清楚的深藍色，胞漿等其它成分脫色。再利用胞漿染料伊紅染胞漿，使胞漿的各種不同成分又呈現出深淺不同的粉紅色。故各種組織或細胞成分與病變的一般形態結構特點均可顯示出來。質量好的HE具備條件1.細胞核與細胞漿藍紅相映，鮮艷亮麗；2.胞核鮮明、核膜、核染色質顆粒均清晰可見；3.組織或一般結構特點及假物質成分均能顯示出來。HE染色過程中常見的問題以及應對方法。河北靠譜的HE染色報告

HE染色常見問題：成片的染色模糊不清，灰染答：（1）組織未及時固定，部分自溶；或固定不佳，深部組織未處理到。這種只能重新固定了。（2）盡管乙醇也是一種固定液，但盡量少用或不用，因為其會導致組織發硬變脆，染色效果不好。（3）包埋時蠟的溫度過高，或切片后烤片時間和溫度過久過高都不好，可能會導致無法染色。（4）脫蠟不徹底；染料有問題；分化過度導致的顏色變淡，鏡下組織界限不清；染完后的脫水和透明不佳，水霧殘留在組織上。（5）通風窗中（防止空氣中的水霧），戴口罩操作封片（減少哈氣帶來的水霧）。值得信賴的HE染色服務HE染色切片知識以及如何做出漂亮的切片。

HE染色組織樣本水化：將浸泡過二甲苯的待測組織樣本先放入無水乙醇中浸泡5min，使脫蠟時用的二甲苯可以被洗脫出去，使水可以進入組織中；再依次置于95%、85%、70%乙醇中各浸泡５min以達到充分水化的效果。組織切片蘇木素染色、分化與反藍：將水化后的組織樣本的切片使用PBS溶液浸泡清洗，每次浸泡５min，總共清洗３次。之后用移液***吸取已經預先配制好的蘇木素染色液，每個組織切片滴加100ul，充分染色10min。染色完畢后使用蒸餾水洗去多余的蘇木素染色液。然后再使用1%的鹽酸乙醇進行分化，使細胞核中結合過多的染液和細胞漿中的多余的染液被除去。分化完成后，再用雙蒸水將組織切片沖洗干凈。為了使蘇木素染藍色，使用弱堿性的促藍液加入組織切片中，讓細胞核染藍色。反藍結束后先用清水進行清洗，再用雙蒸水將組織切片沖洗干凈。

HE染色細胞核被蘇木精染成鮮明的藍色，軟骨基質、鈣鹽顆粒呈深藍色，粘液呈灰藍色。細胞漿被伊紅染成深淺不同的粉紅色至桃紅色，胞漿內嗜酸性顆粒呈反光強的鮮紅色。膠原纖維呈淡粉紅色，彈力纖維呈亮粉紅色，紅血球呈橘紅色，蛋白性液體呈粉紅色。著***況與組織或細胞的種類有關，也隨其生活周期及病理變化而改變。例如，細胞在新生時期胞漿對伊紅著色較淡或輕度嗜堿，當其衰老時或發生退行性變則呈現嗜伊紅濃染。膠原纖維在老化和出現透明變性時，伊紅著色由淺變深。HE染色原理 試劑 染色步驟 注意事項 。

HE染色不管怎么操作，始終無法染色或淡染答：這種情況一般因為組織固定時采用了酸性甲醛;或者組織在甲醛中浸泡時間太長;或者久置的甲醛變性分解為甲酸。補救：防患于未然，要么使用新鮮的中性甲醛固定，要么在存放的甲醛中加一點碳酸鈉中和甲酸。對于已經固定的組織可考慮再次固定；對于已經制出的片子，染色前采用5%重鉻酸鉀溶液浸泡半小時以上，然后自來水漂洗5min，可改善染色。也可以將切片放入3%硫酸鐵銨溶液中，補充染色媒介，增強蘇木素與組織的親和力(蘇木素染色必須要媒介才能染上，單純的蘇木素與組織的親和力很弱)。HE染色取材、染色以及分析方法介紹。河北專業的HE染色報告

石蠟組織切片的HE染色。河北靠譜的HE染色報告

HE染色注意事項：1．組織切片的脫蠟步驟應徹底，否則無論進行那種染色都會發生困難。脫蠟時間要充分，若溶蠟劑使用過久應及時更換以免效率降低，若室溫過低，可將溶蠟劑置于溫箱中進行脫蠟。  2．蘇木素染液使用一段時間后表面易出現亮晶狀飄浮物，這可能是液體表面的過氧化物，必須過濾除去，以防沉渣污染組織切片。蘇木素液一般染過三、四百張切片后，著色力會減弱，著色不鮮艷，呈灰藍色時應及時更換新液。  3．染色的時間長短需依據：染劑對組織的染色作用，室溫條件，切片厚薄，固定液的類別，染液的新舊而進行調節。所以在染色時必須使用顯微鏡觀察染色程度以利掌握時間。  4．分化十分重要。分化步驟的準確也是染色成敗的關鍵，若分化失當則必然引起染色不勻或過淡，過深等現象，因此分化后一定要鏡檢，觀察胞核是否清晰，胞漿呈淡白色。否則需再次分化，不然一旦復染后，組織會呈紫藍色即“藍蓋紅”現象。  5．還原液不宜過濃，若堿性太強易使組織脫落故以淡為宜。  6．伊紅宜淡染，復染過深胞核會不清晰，影響鏡檢。 河北靠譜的HE染色報告